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生物缓冲液pH计校正及使用方法
生物缓冲液在实验分析中经常被用到，它的作用是稳定溶液的pH值。然而，很多人在实验中会遇到无法调节缓冲液pH值的情况，这是为什么呢？如何解决这个问题呢？下面我将详细介绍。首先，从目前使用的pH计来看，国产的pH计或酸度计，校正缓冲液时需要注意以下两种情况：
1、购买市场上配置好的标准溶液，在聚乙烯瓶中密封储存。如果在室温条件下保存1-2个月后，若出现浑浊、沉淀或发霉等情况，就不能继续使用了。已经使用过的校正缓冲液也不能再倒回去使用。2、购买缓冲剂并自己配置。大部分厂家生产的缓冲剂都是干燥型的pH缓冲剂，使用时需要将其溶解在之前煮沸15-30分钟的去离子水中，然后倒入250ml容量瓶中，稀释至刻度，充分摇匀即可。 PBS缓冲液是一种常用的缓冲剂,用于调节pH值和保持溶液的稳定性。中国台湾DPBS缓冲液技术指导
在缓冲溶液中加入少量强酸或强碱，其溶液pH值变化不大，但若加入酸，碱的量多时，缓冲溶液就失去了它的缓冲作用。这说明它的缓冲能力是有一定限度的。缓冲溶液的缓冲能力与组成缓冲溶液的组分浓度有关。0.1mol.L-1HAc和0.1mol.L-1NaAc组成的缓冲溶液，比0.01mol.L-1HAc和0.01mol.L-1NaAc的缓冲溶液缓冲能力大。关于这一点通过计算便可证实。但缓冲溶液组分的浓度不能太大，否则，不能忽视离子间的作用。组成缓冲溶液的两组分的比值不为1∶1时，缓冲作用减小，缓冲能力降低，当c（盐）/c（酸）为1∶1时△pH**小，缓冲能力大。不论对于酸或碱都有较大的缓冲作用。缓冲溶液的pH值可用下式计算：此时缓冲能力大。缓冲组分的比值离1∶1愈远，缓冲能力愈小，甚至不能起缓冲作用。对于任何缓冲体系，存在有效缓冲范围，这个范围大致在pKaφ（或pKbφ）两侧各一个pH单位之内。弱酸及其盐（弱酸及其共轭碱）体系pH=pKaφ±1弱碱及其盐（弱碱及其共轭酸）体系pOH=pKbφ±1例如HAc的pKaφ为4.76，所以用HAc和NaAc适宜于配制pH为3.76～5.76的缓冲溶液，在这个范围内有较大的缓冲作用。配制pH=4.76的缓冲溶液时缓冲能力比较大，此时（c（HAc）/c（NaAc）=1。中国台湾DPBS缓冲液技术指导PBS缓冲液中的磷酸盐和盐水可以维持实验体系的离子强度稳定。
1:50～l:800)后，按行进行包被、洗涤。按列分别加入用稀释液1:100稀释的强阳性、弱阳性、阴性参考血清及稀释液(作空白对照)，保温，洗涤。加工作浓度酶标抗体，洗涤，加底物显色，加酸终止反应后读取A值。选择强阳性参考血清A值；为0．8左右，阴性参考血清A值<0．1的包被抗原稀释度为工作浓度。?方阵(棋盘)法选择包被抗体和酶标抗体的工作浓度将抗体用包被液稀释为10mg／L、lmg／L、／L三个浓度按行包被，每一个浓度包被三行(每行3孔)，分别在每个浓度包被的***、二、三行中分别加入强阳性抗原，弱阳性抗原和阴性对照，将酶标抗抗体用稀释液稀释为1:l000、l:5000、l:10000三个浓度，分别加入每个浓度包被的***、二、三列中。加底物显色，加酸终止反应，分别读取A值。以强阳性抗原液A值在，阴性参考A值<**适条件。据此选择包被抗体和酶标抗体的**佳工作浓度。?二、ELISA**适工作浓度的选择及标准化操作1**适工作浓度的选择?1．1间接法测抗体?????酶标抗体工作浓度的选择：①用IgG进行包被，洗涤。②将酶标IgG用稀释液作一系列稀释后分别加入已包被的孔中，保温、洗涤。③加酸终止反应后，读取吸光度(A)。读取A值在1．0时的酶标抗体稀释度，作为酶标抗体的工作浓度。
缓冲液的作用和使用注意事项
一、缓冲液的概念缓冲液（Buffersolution）通常是由弱酸及其共轭碱或弱碱及其共轭酸缓冲对所组成的溶液，能够在加入一定量其他物质时减缓pH的改变。以生物实验中**常用的一种缓冲液PBS为例，是由Na2HPO4、KH2PO4组成的缓冲对，在PH5.8-8.0范围内有较强的缓冲能力。二、缓冲液的作用缓冲溶液的作用是在有限的范围内调整溶液的pH值，使待测溶液的酸度符合分析方法所规定的范围。例如，苯酚在碱性介质及铁**钾存在下，可与4-氨基安替比林反应生成橙红色的安替比林染料，为了防止芳香胺类的干扰以pH在10士0.2时**为适宜。为此，就需要在待测溶液中加入氨一氯化钱缓冲溶液调整和控制待测溶液的pH为10.0士0.2。 酸和盐浓度相等时，缓冲液的缓冲效率为高，比例相差越大，缓冲效率越低。
2.配制方法：将Tris-HCl平衡苯酚与等体积的氯仿/异戊醇（24:1）混合均匀后，移入棕色玻璃瓶中4℃保存。10%(W/V)SDS组份浓度：10%(W/V)SDS配制量：100ml配制方法：1.称量10g高纯度的SDS置于100-200ml烧杯中，加入约80ml的去离子水，68℃加入溶解2.滴加浓盐酸调节pH值至3.将溶液定容至100ml后，室温保存。2NNaOH组份浓度：2NNaOH配制量：100ml配制方法：1.量取80ml去离子水置于100～200ml塑料烧杯中（NaOH溶解过程中大量放热，有可能使玻璃烧杯炸裂)。2.称取8gNaOH小心地逐渐加入到烧杯中，边加边搅拌。3.待NaOH完全溶解后，用去离子水将溶液体积定容至100ml。4.将溶液转移至塑料容器中后，室温保存。NHCl组份浓度：NHCl配制量：100ml配制方法：1.在ml的去离子水中加入ml的浓盐酸（N)，均匀混合。2.室温保存。5MNaCl组份浓度：5MNaCl配制量：1L配制方法：1.称取gNaCl置于1L烧杯中，加入约800ml的去离子水后搅拌溶解。2.加去离子水将溶液定容至1L后，适量分成小份。3.高温高压**后，4℃保存。20%(W/V)Glucose组份浓度：20%(W/V)Glucose配制量：100ml配制方法：1.称取20gGlucose置于100～200ml烧杯中，加入约80ml的去离子水后，搅拌溶解。2.加去离子水将溶液定容至100ml。缓冲液的浓度会影响其缓冲能力。海南DPBS缓冲液有哪些
此外,PBS缓冲液也可能会对皮肤产生一定的刺激性,长期使用可能会导致皮肤老化和干燥。中国台湾DPBS缓冲液技术指导
pbs缓冲液的配制配方是10X的PBS母液，然后再对其母液进行1:10稀释即可获得PBS缓冲液。PBS是磷酸盐缓冲液（PhosphateBufferSaline），是生物学实验室**常用的缓冲液之一。其主要成分包括：氯化钠（NaCl）、氯化钾（KCl）、磷酸氢二钠（Na2HPO4）和磷酸二氢钾（KH2PO4）。配制步骤：清洗干净所需烧杯、转子和量筒，向一个烧杯装少量去离子水（约100ml）并放入一个转子后放在称量天平旁备用；向另一个烧杯装约800ml去离子水并在微波炉或者水浴锅（65°以上均可）中加热。注意：由于实验室所购买的Na2HPO4常常带有二水、七水或者十二水，与之对应的重量分别为1.78g、2.68g、3.58g。向烧杯中加入预热的去离子水，烧杯放置在磁力搅拌器上搅拌溶解。用量筒定容到1L，保存备用。取100ml10X的PBS母液，加入900ml去离子水即可获得pH=7.4的PBS缓冲液（无需用pH计校准PH值）。中国台湾DPBS缓冲液技术指导
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