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胰酶消化细胞的原理胰酶消化细胞是一种用来分解细胞质和细胞间物质的化学过程它可以被看成一种简单的动力学过程，它将细胞结合部分的物质分解为其他物质，然后这些留下的物质可以用来维持细胞的高能量水平这种过程通过将脂肪、蛋白质、糖类和其它物质分解为小的离子或者原子小分子的方式来发生。胰酶是细胞分解与吸收物质的一种关键分子，通常有四种类型，它们是肽酶，脂水解酶，载脂蛋白酶和糖水解酶，分别可以将蛋白质、脂肪、脂蛋白和糖类物质分解为更小的离子和分子，以便细胞可以更好地吸收物质，维持其自身的正常功能和形态。使用胰酶细胞消化液(不含EDTA)的过程中要特别注意避免消化液被细菌污染。北京重组胰酶供应商家
在组织细胞的体外培养和原代细胞培养中的组织细胞分散（将组织块制备成单个细胞悬液）以及传代细胞培养中，贴壁生长细胞的消化分散均要使用组织细胞消化液。常用的消化液为胰蛋白酶 (Trypsin) ，EDTA 等。胰蛋白酶是一种丝氨酸水解酶，它能把多肽链中赖氨酸和精氨酸残基中的羧基侧切段，水解细胞间的蛋白质，破坏细胞间的连接，从而使组织或贴壁细胞离散成单个细胞。胰酶分散细胞的活性与组织或细胞的特性、胰酶浓度、温度和作用时间有关，在PH 8.0和37℃时，胰酶的作用能力**强，因此使用胰酶时，应把握好浓度、温度和时间，以免消化过度造成细胞损伤。一般常用胰酶的工作浓度为0.25%，而半贴壁细胞或对胰酶敏感的细胞常采用低浓度（0.05%）的胰酶进行细胞消化。由于EDTA能够螯合Ca2+和Mg2+，从而破坏细胞连接促进细胞的解离，因此在胰酶溶液中常常会加入一定量的EDTA混合使用，以增强解离效果。北京重组胰酶供应商家胰酶在细胞培养中的作用和在消化酶中的作用？
0.25%胰酶是细胞生物学中常用的一种生物试剂，下面汇总一下胰酶使用过程中常见的一些问题。胰酶的使用浓度是多少？胰酶浓度：常用0.25%胰酶+0.02%EDTA作为消化液。为什么收到的胰酶会有颜色差异？商品化胰酶溶液需要用干冰运输，在运输过程中，胰酶溶液中的二氧化碳与干冰挥发的二氧化碳可能会极少部分的气体交换，导致溶液PH的漂移。有些胰酶溶液里含有酚红作为PH值指示剂，因此胰酶PH的变化是肉眼可观察到的。由干冰运输过程中导致的PH值的变化很小，PH值会从7.2-8.0变化到了6.8左右，在PH值7.2-8.0的时候，溶液呈淡红色；PH值6.8左右时呈淡黄色。因此胰酶颜色的变化是由PH值的变化引起，归因于使用干冰运输。这种颜色的变化是行业普遍现象，在不同供应商的胰酶产品都会出现。
胰蛋白酶的作用是使细胞间的蛋白质水解从而使细胞离散。不同的组织或者细胞对胰酶的作用反应不一样胰酶分散细胞的活性还与其浓度、温度和作用时间有关，在pH为8.0、温度为37°℃时，胰酶溶液的作用能力**强。使用胰酶时，应把握好浓度、温度和时间，以免消化过度造成细胞损伤。因Ca2+、Mg2+和血清、蛋白质可降低胰酶的活性，所以配制胰酶溶液时应选用不含Ca2+、Mg2+的BSS，如:D-Hanks液。终止消化时，可用含有血清培养液或者胰酶抑制剂终止胰酶对细胞的作用。胰酶细胞消化液具有方便快速的特点。
①制备粗酶液称取定量粗胰酶，其胰蛋白酶活性为，胰淀粉酶活性为，胰脂肪酶活性为。将其用pH值为、浓度为0．2mol/L的乙酸-乙酸钠缓冲液溶解，然后进行真空过滤，收集滤液并用磷酸缓冲液进行稀释，使胰蛋白酶活性为3-10U/mg，备用。②制备反胶束将AOT置于100℃烘箱中干燥至恒重，放入干燥器中冷却至室温。然后称取，加入10L异辛烷，在搅拌下使其形成均匀的分散液，再加入定量蒸馏水，在200r/min的转速下处理2h，获得浓度为。使用时用异辛烷稀释10倍。③萃取将稀释10倍的AOT-异辛烷反胶束置于萃取器中，按照AOT异辛烷反胶束：粗酶溶液体积比为（2-3):1的比例加入粗酶溶液萃取3-4次，，在300-400r/min的转速下萃取5-10min。如此每次萃取完成后，均进行离心分离，离心机转速为4000-6000r/min，时间10-15min收集、合并离心上层清液，进行反萃取，下层萃余液用于制备胰脂肪酶。④反萃取将荷载胰蛋白酶的AOT-异辛烷反胶束置于萃取器中，在搅拌下加入等体积的反萃取液进行反萃取15-20min萃取液为0．。如此反萃取3次，每次萃取完成后，均进行离心分离，离心机转速为4000-6000r/min,时间为15-20min。分别收集、合并离心上层清液和下层反萃取液，前者再生后可再次萃取胰蛋白酶。 胰酶用0.05%还是0.25%的？需不需要含酚红的？北京重组胰酶供应商家
在使用胰酶细胞消化液的过程中要特别注意避免消化液被细菌污染。北京重组胰酶供应商家
常用的消化酶有:胰酶：用得**多的是胰酶。一般浓度在0.25-0.5%。作用时间根据干细胞种类、作用温度等因素而变化很大，从几分钟到几十分钟不等。0.25%的胰酶作用于单层贴壁的干细胞，在37度条件下，一般消化1-5分钟就足够了。终止是用血清。主要作用于干细胞间。配制时不能用含钙、镁的平衡液，否则影响活性。保存于-20度。胶原酶：胶原酶是比较少用的，一般是用原代培养时，从组织消化下干细胞。这种方法作用温和，对干细胞损伤较小，但是，价格也较贵。中止同样是用血清。胰酶的质量是影响干细胞的消化的关键因素之一，如果配的比较标准，消化的时候就容易消化，反之就不易消化。还要在你看到消化过头的情况下，如果干细胞下来的比较多了，这时可以连同cmf或pbs加上营养液一起传。营养液中有血清，胰酶遇到血清就会自动终止消化，但这样操作对干细胞是有一定的影响的。对于容易消化的干细胞，加入pbs缓冲液洗去血清或加入胰酶，先中和血清的作用（30s），弃之，再加入适量胰酶作用10s-40s（根据细胞消化的难易程度），弃之，这样依赖残余的胰酶就可将干细胞消化单细胞。北京重组胰酶供应商家
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